Taq Pol (+)MgCl2

Taq DNA Polimerase, tampão 10x com MgCl2

Catálogo Nº Apresentação Preço (R$) Comprar
POL-100XS 250 U93,71 Adicionar ao Carrinho
POL-100S 500 U170,89 Adicionar ao Carrinho
POL-100M 1.000 U317,52 Adicionar ao Carrinho
POL-100L 2 x 1.000 U571,10 Adicionar ao Carrinho
POL-100XL 4 x 1.000 U1.025,33 Adicionar ao Carrinho

Amplification until 5 kbp
Amplification until 5 kbp

Apenas para uso in vitro!

Definição de unidade: Uma unidade é definida como a quantidade de enzima requerida para catalisar a incorporação de 10 nmoles de dNTPs em uma forma ácido-insolúvel em 30 minutos a 70 °C.

Envio: Transportado em gelo reciclável

Condições de armazenamento: Armazenamento à 20 °C
Avoid freeze/thaw cycles

Validade: 12 meses

Forma: Liquid

Concentração: 5 unidades/μL

Descrição:
Taq Pol é a enzima DNA polimerase recomendada para reações de PCR de rotina. É otimizada para alta especificidade e garante mínima formação de produtos inespecíficos. O sistema de tampão é recomendado para PCR baseado em placa e pipetagem automatizada. A atividade replicativa de DNA acontece a 72˚C. Cataliza a polimerização de nucleotídeos em dupla fita de DNA na direção 5'- 3' na presença de magnésio. Também possui atividade exonuclease no sentido 5'- 3' dependente de polimerização, mas a atividade exonuclease 3'- 5' é ausente.

Contente:
Taq Pol (tampa azul)
5 unidades/μl Taq DNA Polimerase em 20 mM Tris-HCl, 100 mM KCl, EDTA, DTT, 50% (v/v) Glicerol, pH 8.0 (25 °C)

Taq Tampão de reação (tampa vermelha) - 10x conc.
200 mM Tris-HCl, 500 mM KCl, 20 mM MgCl2, pH 8.5 (25°C)

Solução de MgCl2 (tampa amarela)
25 mM MgCl2


PCR Reaction Setup:
The PCR procedure below shows appropriate volumes for a single 50 μL reaction. For multiple reactions, prepare a master mix of components common to all and then dispense appropriate volumes into each PCR reaction tube prior to adding template DNA and primers. Thaw, mix, and briefly centrifuge each component before use.
Add the following components to a microcentrifuge tube:

1. Prepare PCR master mix
Note: Consider the volumes for all components listed next steps to determine the correct amount of water required to reach your final reaction volume.

Component50 μl
assay
Final conc.
PCR grade waterto 50 μl-
10x Reaction Buffer Complete5 μl1x
dNTP Mix 10 mM1 μl 200 μM
Taq DNA Polymerase (5 U/μl) 0,25-0,5 μl1,25-2,5 U/assay
template DNAx μl<500 ng


Mix and briefly centrifuge the components.

2. Add template DNA and primers

Component50 μl
assay
final conc.
Forward primer (10 μM) 0,5 – 2,5 μl 0,1 – 0,5 μM
Reverse primer (10 μM) 0,5 – 2,5 μl 0,1 – 0,5 μM
Template DNAx μl10 pg – 1 μg*


*genomic DNA: 1 ng – 1 μg; plasmidial DNA: 1 pg – 1 ng

Cap each tube, mix, and briefly centrifuge the content.

3. Optimization of MgCl2 concentration:
The 10x reaction buffer contain 20 mM MgCl2, a recommended concentration for most applications. For an individual optimization add MgCl2 stock solution as shown in the table below.

MgCl2 Final Concentration2,5 mM3 mM4 mM
MgCl2 Stock volume to 50 μl1 μl2 μl 4 μl


4. Incubate reactions in a thermal cycler
Recommended cycling conditions:

Initial denaturation 95 °C1 – 3 min1x
Denaturation95 °C15 - 30 sec30 cycles
Annealing**45 - 68 °C 15 - 30 sec30 cycles
Elongation***72 °C 1 min/kb30 cycles
Final extension (optional) 72 °C 1 – 2 min/kb1x
Hold4 – 8 °C 1x


**The annealing temperature depends on the melting temperature of the primers used
***The elongation time depends on the length of the fragments to be amplified. A time of 1 min/kb is recommended.
For optimal specificity and amplification an individual optimization of the recommended parameters may be necessary for each new template DNA and/or primer pair.